Pichia pastoris является разновидностью метилотрофных дрожжей. Pichia pastoris – общее название системы экспрессии, сейчас разделен на три вида: Komagataella phaffii, K. pastoris и K. pseudopastoris. Pichia широко используется для производства белков с использованием методов рекомбинации. Он используется в исследованиях в области биохимии и молекулярной биологии, а также биотехнологической промышленности. P. pastoris удобен в исследованиях, потому что имеет высокую скорость роста и способен расти на простой недорогой среде. У P. pastoris есть два гена алкоголь-оксидазы, которые позволяют Pichia использовать метанол в качестве источника углерода и энергии. Основным преимуществом Pichia перед E.coli является то, что он способен продуцировать дисульфидные связи в белках и гликозилировать их. Это означает, что в случаях, когда необходимы белки с дисульфидными сшивками, кишечная палочка может продуцировать неправильно свернутый белок, который обычно неактивен или нерастворим. Pichia имеет также два основных преимущества перед S. cerevisiae: во-первых, он, как упоминалось выше, является метилотрофом, что означает, что он может расти с простым спиртовым метанолом в качестве единственного источника энергии - его можно легко выращивать в клеточной суспензии в достаточно сильных растворах метанола которые убивают большинство других микроорганизмов, во-вторых, он может расти до очень высокой плотности клеток и в идеальных условиях может размножаться до такой степени, что клеточная суспензия практически представляет собой пасту. По сравнению с другими системами экспрессии, такими как S2-клетки от D. melanogaster или клетки яичника китайского хомячка, Pichia обычно дает гораздо лучший выход. Клеточные линии от многоклеточных организмов обычно требуют сложных богатых сред, включая аминокислоты, витамины и факторы роста. Эти среды значительно увеличивают стоимость производства рекомбинантных белков. Кроме того, поскольку Pichia может расти в средах, содержащих только один источник углерода и один источник азота, она подходит для применений изотопной маркировки, например для дальнейшего ЯМР белка. Еще одним преимуществом P. pastoris является его сходство с хорошо изученным Saccharomyces cerevisiae. Геном P. pastoris GS115 был секвенирован Институтом биотехнологии Фландрии и Гентским университетом и опубликован в журнале Nature Biotechnology.
Аквапорины — интегральные мембранные белки, формирующие поры в мембранах клеток. Семейство аквапоринов входит в более крупное семейство основных внутренних белков (англ. major intrinsic proteins, MIP). За открытие аквапоринов Питер Агре получил в 2003 году Нобелевскую премию по химии. Аквапорины, или "водные каналы", избирательно пропускают молекулы воды, позволяя ей поступать в клетку и покидать её, в то же время препятствуя протоку ионов и других растворимых веществ. Аквапорины совершенно непроницаемы для заряженных частиц, и это их свойство позволяет сохранять электрохимический мембранный потенциал. Аквапорины содержатся в мембранах множества клеток человека, выполняют незаменимую роль в системе водного транспорта растений, а также присутствуют у бактерий, и других организмов.
Аквапорин Aqy1 (AQuaporin from Yeast) необходим для облегчения транспортировки воды через мембрану. Участвует в споруляции (процессе образования спор)[2], морозоустойчивости и осморегуляции. Не работает в большинстве лабораторных штаммов. Локализуется на внешней клеточной мембране и на мембране эндоплазматического ретикулума. [5] Аквапорины содержат два тандемных повтора, каждый из которых содержит три мембранных домена и порообразующую петлю с характерным мотивом Asn-Pro-Ala (NPA). [1] Экспрессия регулируется двумя белками солевого стресса и двумя белками ответа на повышенную температуру. [3] Рассматриваемая модель находится в открытой конформации. Формирует тетрамер.[4]
Общая информация:
PDB id: 3ZOJ
Uniprot id: F2QVG4_KOMPC
Название белка: Aquaporin from yeast – 1
Название гена: Aqy1, 16 chromosome
Молекулярная масса: 30,9 kDa
Число аминокислот: 279
Хлорид-ион
Название по IUPAC: Chloride ion
Брутто-формула: Cl-
Молярная масса: 35.45 г/моль
Ссылка на идентификатор в базе данных PubChem: 312
β-D-октил-глюкозид
Название по IUPAC: (2R,3S,4S,5R,6R)-2-(hydroxymethyl)-6-octoxyoxane-3,4,5-triol
Брутто-формула: C14H28O6
Молярная масса: 292.37 г/моль
Ссылка на идентификатор в базе данных PubChem: 62852
3 в каждом мономере
Является растворителем для выделения трансмембранных белков (не природный лиганд белка)
На картинке ниже представлены размеры каналов в зависимости от того, в закрытой аквапорин конформации, или нет
Субъединицы белка не связаны между собой ковалентно.
Однако в нем присутствуют немногочисленные солевые мостики (разновидность ионной связи между COO- и NH3+
группами). Основной вклад в поддержание тетрамерной структуры вносят гидрофобные карманы и стекинг-взаимодействия.
Эти скрипты можно посмотреть в апплете ниже. Кстати, с помощью особых скриптов, мы посчитали, сколько есть разных вариантов стекинг-взаимодействий:
Phe-Phe - 27, His-Phe - 7, His-His - 0, Tyr-Phe - 8, Tyr-His - 0, Tyr-Tyr - 5, Trp-Phe - 12, Trp-His - 5, Trp-Tyr - 12, Trp-Trp - 3. Гидрофобные карманы искали при помощи Clud.
Водородные связи также вносят вклад в объединение субъединиц, но поскольку технические возможности JMol не позволяют автоматически их найти, мы показали как минимум одну вручную.
Координаты атомов на рисунке:
Белый [ILE]15:A.H/3 #57 48.115 37.977 41.335
Синий [ILE]15:A.N/3 #49 47.869 37.642 40.583
Красный [GLY]11:A.O/4 #4 48.477 39.185 42.887
Это можно считать водородной связью, поскольку расстояние между атомами меньше 3 ангстрем (0,2нм = 2Å), а угол близок к 180°.
Мы взяли для рассмотрения ядро у Phe58, взятого в качестве MyResidue. В окружении этого аминокислотного остатка в основном присутствуют остатки лейцина, аланина и фенилаланина.
Атомы на расстоянии 1 Å от остатка MyResidue отсутствуют и присутствуют, начиная с 2 Å. C 7 Å атомы Phe58 уже практически полностью закрыты.
Для вычисления характерного расстояния между соседними не связанными ковалентно атомами в гидрофобном ядре было посчитано среднее значение длины среди 28 связей. Среднее расстояние равно 2,78 Å.
Для того, чтобы выяснить, сможет ли поместиться между соседними атомами ядра еще один, было высчитано среднее расстояние между границами Ван-дер-Ваальсовых радиусов. Данная величина равна 0,63 Å, что говорит о том, что, например, молекула воды, которая имеет радиус в районе 1,4 Å, маловероятно сможет поместится между атомами гидрофобного ядра. [6] Но стоит заметить, что существует несколько пар атомов, например, углерод из Gly95 и углерод из Leu57, которые имеют большее расстояние между друг другом, чем Ван-дер-Ваальсов радиус воды (1,53 Å). Из этого можно сделать вывод, что в некоторых местах молекула воды может попасть в гидрофобное ядро.
Отметим, что это молекулы растворителя, которыми удалось извлечь белок из мембраны, а не простетическая часть реального белка. Тем не менее, мы изучили, как он с ним связывается. Ионных, ковалентных взаимодействий и солевых мостиков ожидать не приходится. Но вот своим углеводородным хвостом он связывается с фенилаланином, то есть с помощью "гидрофобных" взаимодействий. Также BOG образует водородные связи с белком (см. скрипт).
Функция хлорид-иона в аквапорине остается неясной. Более того, большая часть аквапоринов не пропускает их через себя, зато пропускает человеческий AQP6 [7]. Один хлорид-ион находится прямо в канале и "закупоривает" отверстие. Возможно, именно из-за того, что он там застрял, мембрана с аквапорином обладает свойством избирательной проницаемости. Удерживается он в канале несколькими аргининами сверху, которые несут положительный заряд и несколькими триптофанами снизу. Есть основания полагать, что аргинины там и нужны, чтобы задерживать отрицательно-заряженные ионы. Остальные хлорид-ионы держатся засчет δ+ заряда NH группы пептидной связи. Все скрипты можно найти ниже в апплете.
1. Почему водородных связей между субъединицами нет
2. Почему нет ковалентных связей между субъединицами
5. Какие есть стекинг-взаимодействия
6. Гидрофобные взаимодействия между мономерами
Чтобы предсказать по первичной последовательности, какие участки белка погружены в мембрану, а какие нет, мы воспользовались сервисом Transmembrane protein topology prediction with a hidden Markov model. В результате работы сервиса TMHMM, мы получили следующие данные:
На оси Y отображены соответсвующие вероятности, а на оси Х – номер аминокислотного остатка белка. Красным цветом показаны предполагаемые трансмембранные части, розовым - части, обращеннные наружу, синим - части, обращенные внутрь.
Было предсказано 6 трансмембранных частей, 3 находящихся снаружи и 4 внутри, что соответствует действительности. Хотя можно заметить, что координаты участков отличаются в среднем на 4-5а.о., предсказание выполнено довольно точно.
Для представления расположения аквапорина в мембране мы взяли существующую модель из банка PDB
Для изучения был взят аквапорин Aqy1 Pichia Pastoris. В ходе исследования данного белка было выяснено, что он является тетрамером, т.е. состоит из 4 субъединиц-мономеров. Также аквапорин имеет 2 низкомолекулярных лиганда (хлорид-ион и β-D-октил-глюкозид, которого находится по 3 в каждом мономере). Были изучены связи между ними. Еще наша команда изучила гидрофобное ядро, и в ходе исследования были сделаны некоторые выводы по его плотности упаковки. В ходе работы были также сделаны предсказания о положении белка в мембране, которые в дальнейшем оказались соответствующими действительности.
Владимиров Даниил исследовал белок-белковые взаимодействия, подготовил видеоролик и иллюстрации.
Петрухин Егор занимался изучением гидрофобного ядра, разработал соответствующие скрипты и иллюстрации.
Носкова Елизавета анализировала положение аквапорина в мембране, BOG- и белок-белковые взаимодействия, написала скрипты для этого.
Никитин Павел оформил отчёт и разместил его на своем сайте, а также изучал особенности хлорид-белковых взаимодействий.
[1] Bonhivers M. et al. Aquaporins in Saccharomyces genetic and functional distinctions between laboratory and wild-type strains //Journal of Biological Chemistry. – 1998. – Т. 273. – №. 42. – С. 27565-27572. doi: 10.1074/jbc.273.42.27565
[2] Sidoux-Walter F., Pettersson N., Hohmann S. The Saccharomyces cerevisiae aquaporin Aqy1 is involved in sporulation //Proceedings of the National Academy of Sciences. – 2004. – Т. 101. – №. 50. – С. 17422-17427. doi: 10.1073/pnas.0404337101
[3] yeastgeonome.org (AQY1 / YPR192W Regulation)
[4] PDB in Europe
[6]. Дж. Эмсли. Элементы. 1993г
[7] Abir-Awan M. et al. Inhibitors of mammalian aquaporin water channels //International journal of molecular sciences. – 2019. – Т. 20. – №. 7. – С. 1589. doi: 10.3390/ijms20071589