PDB ID моего белка — 1PJX и 3I1C, причем разрешение первой структуры выше чем второй (разрешения составили 0.85 Å и 2.20 Å соответственно). Давайте посмотрим как они выглядят (рис. 1)
Белок представляет собой шестилопастной бета-пропеллер. Можно видеть, что структура 1PJX содержит помимо белка молекулы буфера для кристаллизации (глицерин, PEG, MES буфер), а также ионы кальция. При взгляде на структуры мне показалось, что концы белковых цепей по-разному свернуты, чтобы это проверить я решила выровнять структуры (рис. 2)
Исходя из выравнивания я заключила что внешне структуры очень схожи (RMSD составило 0.347), некоторые участки не совпадают в точности, концы действительно оказались по-равзному ориентированы, однако имеют право:) (то есть, я думаю, что самые концы не входят в состав вторичной структуры и таким образом их ориентация в большей степени зависит от кристаллизации, нежели от качества восстановления структуры)
Далее я открыла файлы электронных структур. Чтобы визуализировать фрагмент структуры были вызваны следующие команды PyMol:
select gly227, resi 227
isomesh gly_meh, {protein_id}_2fofc, 2, gly227, carve=2
Вот такие изобажения я получила для 227 остатка глицина (рис. 3)
На изображениях видно, что для структуры 1PJX разрешение выше, это ясно, посколько электронная плотность отдельных этомов приобретает характерную форму шара.
Для этого задания мне досталась структура с PDB ID 2A3R. Далее я получила серию картинок с разными уровнями подрезки электронной плотности при помощи следующих команд:
fetch 2A3R
fetch 2A3R type=2fofc
show sticks, backbone
isomesh meh_{1-3}, 2A3R_2fofc, {1-3}, backbone, carve=2
Вот такие изображения белка я получила:
Действительно увеличивая уровень подрезки, можно налюдать снижение покрытия некоторых регионов mesh-ем. У меня это определенная боковая поверхность белка которая не контактирует второй цепью, а также самый кончик остова. Данные участки в меньшей степени взаимодействуют с остальным белком по сравнению с коровой частью. Кроме того поскольку в файле белок было две молекулы белка, где поверхность, расположенная ближе к второй белковой цепи имела большее покрытие, можно предположить, что за счет взаимодействий двух цепей белка коцформаций остова там меньше.
Мне достался вариант B этого задания, то есть в белке с PDB ID: 6FWJ мне нужно найти альтлоки 136 аргинина. Pymol показывает сразу две конформации, если просто открыть файл с структурой:
Рассмотрим теперь какие взаимодействия стабилизируют эти две конформации (рис. 6)
Можно видеть, что конформацию "A" стабилизируют два остатка аспартата, взаимодействуя с двумя различнвми азотами +
есть взаимодействие с 2 молекулами кристаллической воды. Конформацию "B" стабилизируют так же два остатка: серин и треонин
(у которого, у слову, тоже 2 альтлока, поэтому он может взаимодействовать с одним или двумя азотами аргинина); и 3 молекулы воды.
Какая из конформаций должная быть стабильней? Сложно сказать, наверное взаимоействия с водой не так важны для стабильности
в данном случае, как взаимодействия с остальными остатками (потому что не в кристалле вода — мобильная молекула), исходя из этого
я бы предположила, что более стабильная конформация "B". В ней потенциальные водородные связи короче.
Посмотрим теперь как это согласуется с электронной плотностью:
В результате, исходя из электронной плотности, стабильнее конформация "A". Возможно, это связано с тем, что треонин, стабилизирующий конформацию "B" сущестует в 2 конформациях, из-за чего на самом деле положение агинина менее стабильно (в конформации "B"). Кроме того, я еще подумала, что возможно имеет смысл какие атомы азота аргина участвуют в водородных связях.
Команды PyMol, которые я использовала в этом задание:
fetch 6FWJ
fetch 6FWJ type=2fofc
select my_residue_A, resi 136 and alt "A"
select my_residue_B, resi 136 and alt "B"
distance contacts, my_residue_A, all, 5, mode=2
distance contacts, my_residue_B, all, 5, mode=2
isomesh meh, 6FWJ_2fofc, 2, my_residue_B, carve=3
В данном задание надо было раскрасить белковый остов по величине B-фактора. Получившиеся изображения представлены на рис.8.
Участки с более высоким B-фактором окрашены в красный. Такие участки — петли и самый конец полипептидной цепи.
Можно предположить, что более высокому B-фактору соответствуют участки с более нестабильным положением. Такие участки
будут находится с большей вероятностью по краям глобулы, у них будет меньше контактов с осталной полипептидной цепью.
Рис. 8 в целом это отражает.
Далее на рис. 9 я отриовала аминокислотный остаток, у которого величина B-фактора увеличивалась к концу (то есть в
моем случае конец белел).
Можно видеть что при увеличение уровня подрезки электронная плотность перестает покрывать области с высоким B-фактором. Это означает, что низкие значения B-фактора отвечают высокой электронной плотности и наоборот.
Команды PyMol, которые я использовала в этом задание:
fetch 6FWJ
fetch 6FWJ type=2fofc
spectrum b, blue_white_red, backbone
spectrum b, blue_white_red
isomesh meh, 6FWJ_2fofc, {1-3]}, resi 187, carve=2
На страницу семестра