Седьмой семестр

Задание d1. Определение вторичной структуры


Определение вторичной структуры

Для определения вторичной структуры 2I5B использовалась программа DSSP. Выдача программы: -2I5B.dssp-. На рисунке ниже изображены элементы вторичной структуры цепи А 2I5B.

pic1

Изображение структуры 2I5B

В таблице 1 приведено сравнение результата выдачи программы для четырех α-спиралей и четырех β-тяжей

Таблица 1. Сравнение результатов определения элементов вторичной структуры
№ элемента вторичной структуры Результат DSSP (номера остатков) Аннотация в pdb-файле (номера остатков)
α-спираль
1 19 – 27 18 – 30
2 59 - 66 (67 - 73 516 спираль) 58 – 73
3 86 - 98 85 – 99
4 121 - 126 (127 - 131 516 спираль) 120 – 131
β-тяж
1 51 – 56 52 – 56
2 33 – 45 33 – 44
3 5 - 13 5 – 13
310 спирали
1 132 - 134 132 – 135
2 180 - 182 180 – 183


В целом, границы, определенные с помощью DSSP и в аннотации PDB-файла схожи. Можно увидеть, что границы β-листов совпадают или отличаются на один остаток, границы же α-спиралей меньше соответствуют PDB-файлу. Любопытно,что для двух спиралей (остатки 58 – 73 и 120 – 131 по аннотации PDB) программой DSSP было определено, что их части, 67 - 73 и 127 - 131 соответственно, являются 516, а не α-спиралями. В аннотации PDB это не отмечено. Спираль 120 – 131 показана ниже, участок 127 – 131 покрашен желтым цветом.

pic2

Изображение структуры 2I5B. Участок 516 спирали


Построение карты β-листа с помощью программы SheeP

С помощью программы SheeP построили карту β-листа цепи А структуры 2I5B. Изображение одной из карт показано ниже.

pic3

Карта β-листа

На рисунке ниже изображен β-лист, показанный на карте. Он состоит из 9 тяжей.

pic4

β-лист выделен желтым цветом

Столбец в карте соответствует "хребту" β-листа. На рисунке ниже показан хребет, соответствующий столбы с аминокислотами 198, 193, 175, 138, 106, 80, 9, 37.

pic5

Хребет β-листа покрашен зеленым

К гидрофобному ядру обращена "желтая" сторона листа. Это будет более наглядно видно в задании d3.

Программа Stride умеет предсказывать элементы вторичной структуры, а также выдает список водородных связей. Файл с выдачей программы 2i5b_hbonds.txt. Для карты водородных связей выбрали следующий участок, состоящий из трех тяжей и четырех гребней:

pic6

Участок β-листа, выбранный для построения карты

pic7

Водородные связи в участке β-листа, визуализация в pymol

По выдаче программы Stride построили карту водородных связей участка (ориентация участка на всех рисунках сохранена):

pic8

Карта водородных связей участка β-листа

Есть один участок нерегулярности: Lys5 выступает как акцептор и образует две водородные связи - с Asp76 и Ala77.

Задание d2. Совмещение структур


Построение совмещения белка pyridoxine kinase (2I5B) и четырех гомологов

С помощью сервиса PDBeFold было найдено 4 гомолога 2I5B: 4C5L, 1UB0, 1JXH и 4JJP (Искали для цепи А). На рисунке ниже показано совмещение структур.

pic6

Совмещение 2I5B и его структурных гомологов.

Структурное выравнивание superpos.fasta (большие буквы в файле соответствуют выровненным позициям) можно сравнить с выравниванием по последовательностям seq_alignment.fasta (выполнено в JalView TCoffee со стандартными параметрами).

pic7

Выравнивание по последовательностям 2I5B и его структурных гомологов.

На рисунке ниже показан участок, на котором выравнивания по последовательностям и по структурам не совпадают. Можно увидеть, что по структурам все аспарагиновые кислоты 192 позиции выравниваются, но по последовательностям аспарагиновые кислоты двух структур- нет (190 позиция выравнивания).

pic8

Участок, на котором выравнивания по последовательностям и по структурам не совпадают

Если обратиться к наложению пространственных структур, то можно увидеть, что аспартаты действительно довольно хорошо выравниваются, поэтому скорее структурное выравнивание правильное.

pic8

Наложение структур. Аспартаты пограшены красным цветом, желтым - их С&alpha атомы

Поиск по сходству структур в PDBeFold

В PDBeFold осуществили поиск структурных гомологов домена 1dek A: 33-154. Использовали параметры по умолчанию:

pic8

Форма PDBeFold

Выдача была отсортирована по RMSD. В ней 35 структур (PDBeFold_output.txt), исходного домена в ней нет. Дело в том, что параметры по умолчанию требуют того, чтобы процент совпадения структур был не меньше 70, а так как домен, который мы ищем, занимает меньше 70% общей длины белка, белок не находится.

Совмещение структур альфа- и бета- цепочек константного домена T-клеточного рецептора

Была выбрана структура Т-клеточного рецептора 1OGA: альфа-цепь - region d:118-202, бета-цепь - region e:119-245. Альфа- и бета-цепи показаны на рисунке:

pic8

Альфа- и бета-цепочки константного домена структуры 1OGA. Альфа-цепочка покрашена зеленым, бета-цепочка - синим.

С помощью SheeP построили карту бета-листов:

pic8

Карта бета-листа для альфа-цепочки

pic8

Карта бета-листа для бета-цепочки

Бета-листу альфа-цепочки соответствует первый бета-лист бета-цепочки. На рисунках выше они изображены в одной ориентации. Консервативный остаток цистеина - 145 в бета-цепочке и 134 в альфа-цепочке.

Сомещение цепочек было построено в Pymol с помощью следующих команд:

 pair_fit \
1oga_alpha & resi 134 & n. ca, 1oga_beta & resi 145 & n. ca, \
1oga_alpha & resi 122 & n. ca, 1oga_beta & resi 127 & n. ca, \
1oga_alpha & resi 175 & n. ca, 1oga_beta & resi 192 & n. ca, \
1oga_alpha & resi 155 & n. ca, 1oga_beta & resi 172 & n. ca, \
1oga_alpha & resi 133 & n. ca, 1oga_beta & resi 144 & n. ca, \
1oga_alpha & resi 135 & n. ca, 1oga_beta & resi 146 & n. ca
 
pic8

Совмещение альфа-(красный) и бета-цепочек (синий).

RMSD совмещения - 0,485. Общий ход полипептидной цепи совпадает. Совмещение сохранено в файле.

Задание d3. Нахождение гидрофобных кластеров


С помощью программы Clud были найдены гидрофобные кластеры в структуре 2I5B. С порогом расстояния 5 и минимальным размером кластера 7 было получено 4 гидрофобных ядра, которые показаны на рисунках ниже. В белке есть одно очень крупное ядро, состоящее из 2504 атомов, принадлежащих одной стороне β-листа и части α-спирали, к которая обращена к этой стороне. Другие гидрофобные ядра принадлежат некоторым петлям и части β-листа.

pic1

pic1

pic1

pic1

Гидрофобные кластеры структуры 2I5B

Самый большой гидрофобный кластер соответствует единственному фосфометилпиримидинкиназному домену белка (позиции 13-261).

Также нашли гидрофобные ядра комплекса белка с ДНК, принадлежащего семейству ETS. С порогом расстояния 5.4 и минимальным размером кластера 5 было найдено 3 кластера: большой кластер, состоящий из 95 атомов, принадлежащих α-спиралям, кластер, состоящий из 20 атомов, принадлежащим частям α-спиралей и петли, и небольшой кластер из 6 атомов, принадлежащий части спирали, взаимодействующей с ДНК. Изображения кластеров представлены ниже.

pic1

pic1

pic1

Гидрофобные кластеры структуры ДНК-белкового комплекса 1B72

Задание d4: Построение поверхности, раскраска участка поверхности: pymol

Получение изображений поверхностей контактов c помощью pymol

Для выполнения задания была выбрана структура 1qp7 ДНК-связывающего белка, репрессора транскрипции PurR типа спираль-поворот-спираль. Изображения поверхности контакта мономера белка с симметричным мономером, контакта димера белков с двойной спиралью и контакта ДНК с димером белков, полученные средствами pymol, показаны на рисунках ниже.

pic1

Биологическая единица

pic1

pic1

Поверхность контакта мономера белка с симметричным мономером на фоне остовной (ribbon) модели мономера

pic1

Поверхность контакта димера белков с двойной спиралью ДНК на фоне остовной модели части белка, вовлечённой в контакт

pic1

pic1

Поверхность контакта ДНК с димером белков на фоне проволочной (sticks) модели двойной спирали

Изображение гидрофобных поверхностей (CluD)

С помощью следующих команд сохранили в файл координаты димера 1qp7:

load 1QP7.pdb, A_1
create B_1, A_1
alter_state 1,B_1,(x,y,z)=(x,-y,-z)
save 1QP7_dimer.pdb

С помощью сервиса Clud было найдено 4 гидрофобных кластера размером не менее 10 атомов:

pic1

Гидрофобные кластеры структуры 1qp7

Изображения поверхностей контактов мономеров белков, образующих контакты с другим мономером, а также поверхности контакта ДНК с димером белков показаны на рисунке ниже. Синим цветом выделена поверхность, относящаяся к атомам, входящим в найденные гидрофобные кластеры.

pic1

pic1

Поверхности контактов мономеров белка друг с другом и с ДНК, синим цветом покрашены области, относящиеся к атомам, входящим в гидрофобное ядро.

Задание d5: Сравнение доменов SCOP/SCOPe, ECOD, CATH и Pfam

Для транскрипционного репрессора PurR HTH-типа(UniProt ID - PURR_ECOLI, PDB ID - 1QP7) сравнили границы доменов согласно базам данных SCOP/SCOPe, ECOD, CATH и Pfam.

Согласно Pfam в белке два домена: LacI (3-48) и Peripla_BP_3 (170-331).

pic1

Домены PURR_ECOLI по Pfam

По SCOP также два домена, N-терминальный домен d1qp7a2: 1qp7 с границами 3-58:

Класс All alpha proteins
Фолд lambda repressor-like DNA-binding domains
Суперсемейство lambda repressor-like DNA-binding domains
Семейство GalR/LacI-like bacterial regulator


И С-терминальный d1qp7a2: 1qp7 с границами 59-340:

Класс Alpha and beta proteins (a/b)
Фолд Periplasmic binding protein-like I
Суперсемейство Periplasmic binding protein-like I
Семейство L-arabinose binding protein-like


По CATH в белке три домена:



Согласно ECOD (Evolutionary Classification of Protein Domains) в белке три домена:

pic1

Таким образом, границы доменов и даже их число для одной структуры в разных базах данных довольно различается.

Задание d6: Использование сайта PDB

Получение последовательностей белков, структуры которых определены с помощью электронной микроскопии

Для того, чтобы получить последовательности белков, стуктуры которых определены с помощью метода электронного микроскопии, воспользовались advanced search на сайте PDB, а именно : Experimental Method, ELECTRON MICROSCOPY. Было обнаружено 917 структур. Результат поиска в fasta-формате: el_micr.fasta

Поиск пары белков, гибкое структурное выравнивание включает большее число атомов, чем жесткое

В качестве пары были выбраны структуры спектрина 2spc, цепь A (107 остатков) и альфа-спектрина 1aj3, цепь А (98 остатков) (Взяты из статьи по FATCAT 2003 года).

pic1

Жесткое структурное выравнивание FATCAT

Гибкое выравнивание было выполнено с помощью программы FATCAT:

pic1

Гибкое структурное выравнивание FATCAT